Поиск
Подать статью EN
Вестник Балтийского федерального университета им. И. Канта. Серия: естественные науки

2026 Выпуск №2

Назад к списку Скачать статью
RUS
Сохранить XML для: JATS (вып.)
ENG
Сохранить XML для: JATS (вып.)
Зинуров М. Р. Зинурова Е. Е. Валидов Ш. З. Фролов М. Д. Сысоева М. А. Багаева Т. В.

Синтез лектинов микромицетами рода Alternaria

DOI
10.5922/vestniknat-2026-2-7
Страницы / Pages
108-118
Alternaria лектины микромицеты синтез идентификация

Аннотация

На примере 10 штаммов микромицетов, включая музейные штаммы Alternaria alternata, Alternaria solani и Alternaria infectoria, а также изолятов, выделенных из природных образцов (почва, клубни картофеля, семена пшеницы), была установлена способность микромицетов рода Alternaria к синтезу эндогенных и экзогенных лектинов. Микромицеты рода Alternaria способны синтезировать экзогенные и эндогенные лектины. Установлено, что активность лектинов микромицетов рода Alternaria исследованных штаммов значительно ниже, чем у микромицетов рода Fusarium. Тем не менее увеличить титр активности лектинов микромицетов рода Alternaria (в 2—8 раз) удалось при обработке поверхности эритроцитов нейроминидазой. Среди новых изолятов, микромицетов рода Alternaria, был отобран штамм Alternaria alternata 4 (зерно), синтезирующий лектины с наибольшим титром активности (512 ед.). Для подтверждения его принадлежности к роду Alternaria был проведен молекулярно-генетический анализ, который показал, что полученный штамм принадлежит к отделу Ascomycota, классу Ascomycetes, подкласс Dothideomycetidae, порядку Pleosporales, семейству Pleosporaceae, виду Alternaria alternata. Сравнение титра активности экзогенных и эндогенных лектинов показало преимущество синтеза внутриклеточных форм лектинов, что делает их наиболее перспективными для дальнейших исследованиях.

Список литературы

  1. El-Maradny Y. A., El-Fakharany E. M., Abu-Serie M. M. et al. Lectins purified from medicinal and edible mushrooms: Insights into their antiviral activity against pa­thogenic viruses // J. Biol. Macromol. 2021. Vol. 179. P. 239—258. doi: 10.1016/j.ijbi­omac.2021.03.015.
  2. Santos M., Silvia T., Napoleao P. et al. Lectins: Function, structure, biological pro­perties and potential applications // Research Trends. Current Topics in Peptide & Protein Research. 2014. Vol. 15. P. 41—62.
  3. Багаева Т. В., Мухаммадиев Рин. С., Мухаммадиев Риш. С., Алимова Ф. К. Скрининг микромицетов по способности к синтезу лектинов // Микология и фитопатология. 2014. T. 48, № 2. С. 107—111. EDN: RYLIQX.
  4. Ганнибал Ф. Б. Мониторинг альтернариозов сельскохозяйственных культур и идентификация грибов рода Alternaria // Российская академия сельскохозяйственных наук ВИЗР. СПб., 2011. EDN: UBBHJV.
  5. Fung F., Tappen D., Wood J. Alternaria-associated asthma // Appl. Occup. Environ. Hygiene. 2000. P. 924—927. doi: 10.1080/104732200750051157.
  6. Далинова А. А., Салимова Д. Р., Берестецкий А. О. Грибы рода Alternaria как продуценты биологически активных соединений и биогербицидов // Прикладная биохимия и микробиология. 2020. Т. 56, № 3. C. 223—241. doi: 10.31857/S0555109920030022. EDN: EZMZUB.
  7. Берестецкий А. О., Далинова А. А., Волосатова Н. С. Профили метаболитов и биологическая активность экстрактов из культуры гриба Alternaria sonchi S-102 при различных способах его культивирования // Прикладная биохимия и микробиология. 2019. Т. 55, № 3. С. 271—281. doi: 10.1134/S0555109919030048. EDN: ZADCDJ.
  8. Duke S. O., Owens D. K., Dayan F. E. Control:Sustainability, Hazards, and Risks in Cropping Systems Worldwide / eds. N. E. Korres, N. R. Burgos, S. O. Duke. Boca Raton, 2019. doi: 10.1201/9781315155913-8
  9. Hugo F. J., Evandro A. M., Wildson S. M.B. et al. Molecular mechanisms involved in the antitumor activity of isolated lectins from marine organisms: A systematic review // Current Drug Targets. 2020. Vol. 21, № 6. P. 616—625. doi: 10.2174/1389450120666191122113850.
  10. Yu H., Shu J., Li Zh. Lectin microarrays for glycoproteomics: an overview of their use and potential // Exp. Rev. Proteomics. 2020. Vol. 17, № 1. P. 27—39. doi: 10.1080/14789450.2020.1720512.
  11. Lastovickova M., Strouhalova D., Bobalova J. Use of lectin-based affinity techniques in breast cancer glycoproteomics // J. Proteome Res. 2020. Vol. 19, № 5. P. 1885—1899. doi: 10.1021/acs.jproteome.9b00818.
  12. Fujii Y. Methods in molecular biology. Purification and functional characterization of the effects on cell signaling of Mytilectin // Lectin Purific. & Anal. Chap. 21. 2020. P. 201—213. doi: 10.1007/978-1-0716-0430-4_21.
  13. Larroque M., Barriot R., Bottin A. et al. The unique architecture and function of cellulose-interacting proteins in oomycetes revealed by genomic and structural analyses // BMC Genomics. 2012. Vol. 13. P. 605—609. doi: 10.1186/1471-2164-13-605.
  14. Мухаммадиев Рин. С., Мухаммадиев Риш. С., Скворцов Е. В. и др. Выделение, очистка и характеристика лектина Fusarium solani 4 // Прикладная биохимия и микробиология. 2021. Т. 57, № 2. C. 145—151. doi: 10.31857/S0555109921020094. EDN: BDVBAD.
  15. Луцик М. Д., Панасюк Е. Н., Луцик А. Д. Лектины. Львов, 1981.
  16. Bhari R., Kaur B., Singh R. S. Lectin activity in mycelial extracts of Fusarium species // Brazilian journal of microbiology. 2016. Р. 775—780. doi: 10.1016/j.bjm.2016.04.024.
  17. Sambrook J., Russel D. W. Molecular cloning: a laboratory manual // Cold Spring Habor Laboratory Press. 2001.
  18. Raja H. A., Miller A. N., Pearce C. J., Oberlies N. H. Fungal Identification Using Molecular Tools: A Primer for the Natural Products Research Community // J. Nat. Prod. 2017. Vol. 80. P. 765—770. doi: 10.1021/acs.jnatprod.6b01085.
  19. Brazee N. J., Hulvey J. P., Wick R. L. Evaluation of partial tef1, rpb2, and nLSU sequences for identification of isolates representing Armillaria calveacens and Armillaria gallica from northeaster on North America // Fungal Biol. 2011. Vol. 115, № 8. P. 741—749. doi: 10.1016/j.funbio.2011.05.008.