Поиск
Подать статью EN
Вестник Балтийского федерального университета им. И. Канта. Серия: естественные науки

2026 Выпуск №2

Назад к списку Скачать статью
RUS
Сохранить XML для: JATS (вып.)
ENG
Сохранить XML для: JATS (вып.)
Полунина Ю. Ю. Никитина С. М. Гущин А. В.

Экспериментальная оценка влияния отдельных аспектов нереста балтийской сельди на модельный вид ветвистоусых ракообразных

DOI
10.5922/vestniknat-2026-2-5
Страницы / Pages
79-94
нерест салаки стероидные соединения рост и плодовитость дафний Вислинский залив

Аннотация

Проведены эксперименты по влиянию половых продуктов и воды, отобранных с места скопления нерестящейся балтийской сельди Clupea harengus membras из Вислинского залива на выживаемость, рост, линьку, число яиц в выводковой камере и отрожденной молоди модельного вида планктонных ракообразных Daphnia magna. В первой серии экспериментов добавляли фиксированный объем суспензии половых продуктов самцов и самок салаки (гонады V стадии зрелости) в экспериментальные емкости и сравнивали с контролем. Во второй серии экспериментов дафний акклимировали к осолоненной воде (до 3 PSU), затем использовали их в контроле и эксперименте для оценки влияния воды с нерестилища салаки, отобранной в акватории залива. В средах с половыми продуктами салаки плодовитость дафний была значимо ниже контрольных величин. Рост дафний стимулировало добавление гонад самок (число линек в среднем 114 %), а гонад самцов — угнетало (54 %) относительно контроля (84 %). Вода с нерестилища салаки не оказала существенного влияния на рост и частоту линек дафний, но достоверно стимулировала образование партеногенетических яиц в выводковой камере дафний (контроль 7.7, эксперимент 13, 0 яиц/самку/сутки). Выдвинута гипотеза, что половые продукты салаки, а также биологически активные соединения, попадающие в воды Вислинского залива при нересте, могут оказывать влияние на рост и плодовитость природных популяций ветвистоусых ракообразных.

Список литературы

  1. Зеликман Э. А. Нетрофические регуляторные взаимоотношения у морских беспозвоночных // Биология океана. Т. 2 : Биологическая продуктивность океана / отв. ред. М. Е. Виноградов. М., 1977. С. 23—33.
  2. Кулаковский Э. Е. Адаптация как проявление информационных связей в живых системах // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 2000. № 36 (4). С. 362—366.
  3. Larsson P., Dodson S. Invited Review Chemical communication in planctonic // Arch. Hydrobiol. 1993. № 2. P. 129—155.
  4. Задереев Е. С. Химические взаимодействия среди планктонных ракообразных // Журнал общей биологии. 2002. Т. 63, № 2. С. 159—167.
  5. Helgenn J. C. Feeding rate inhibition in crowded Daphnia pulex // Hydrobiologia. 1987. № 154. Р. 113—119.
  6. Задереев Е. С., Губанов В. Г. Влияние плотности популяции Moina macrocopa (Cladocera) и пищевой обеспеченности на смену способа размножения у M. macrocopa // Экология. 1995. № 6. С. 412—414.
  7. Арбачаускас К., Мажейка В., Палайма А. Влияние метаболитов карася (Carassicus carassicus) на характеристики жизненного цикла Daphnia pulex // Проблемы гидроэкологии на рубеже веков : тез. докладов междунар. конф. 2000. С. 12—13.
  8. Dodson S. I. The ecological rote of chemical stimuli for the zooplankton: Predator-induced morphology in Daphnia // Oecologia. 1989. № 78. P. 361—367. doi: 10.1007/BF00379110.
  9. Larsson P. Intraspecific variability in response to stimuli for male and ephippial formation in Daphnia pulex // Hydrobiologia. 1991. Vol. 225. P. 281—300.
  10. Loose C. J., Von Elert E., Dawidowicz P. Chemically-induced diel vertical migration in Daphnia: a new bioassay for kairomones exuded by fish // Archiv. Hydrobiol. 1993. Vol. 126. P. 329—337.
  11. Slusarczyk M. Predator-induced diapause in Daphnia // Ecology. 1995. Vol. 76, № 3. P. 1008—1013.
  12. Blaustein L. Non-consumptive effects of larval Salamandra on crustacean prey: can eggs detach predators? // Oecologia. 1997. № 110. P. 212—217.
  13. Никитина С. М. Реакция свободноживущих гидробионтов на биологически активные вещества естественного и антропогенного происхождения // Вестник БФУ им. И. Канта. Сер.: Естественные науки. 2010. № 7. С. 51—57.
  14. Никитина С. М. Биологически активные стероидные соединения беспозвоночных животных. Калининград, 2019.
  15. Никитина С. М., Полунина Ю. Ю. Комплекс стеродиных гормонов у бес­позвоночных гидроибонтов // Биология внутренних вод. 2024. Т. 17, № 4. С. 648— 660. doi: 10.31857/S0320965224040138.
  16. Scott A. P. Is there any value in measuring vertebrate steroids in inverte­brates? // Gen. and Comp. Endocrinol. 2018. Vol. 265. P. 77. doi: 10.1016/j.yg­cen.2018.04.005
  17. Fodor I., Urbán P., Scott A. P., Pirger Z. A. А critical evaluation of some of the recent so-called ‘evidence’for the involvement of vertebrate-type sex steroids in the reproduction of mollusks // Mol. Cell. Endocrinol. 2020. Vol. 516. P. 110949. doi: 10.1016/j.mce.2020.110949.
  18. Fodor I., Pirger Z. From dark to light-an overview of over 70 years of endocrine disruption research on marine mollusks // Frontiers in Endocrinol. 2022. Vol. 13. P. 903575. doi: 10.3389/fendo.2022.903575.
  19. Belanger A. J. An electro-olfactogram investigation of the responses of female round gobies (Neogobius melanostomus) to conspecific odours and putative sex pheromones // MS Thesis. Windsor, 2003.
  20. Arbuckle W. J., Belanger A. J., Corkum L. D. et al. In vitro biosynthesis of novel 5β-reduced steroids by the testis of the round goby, Neogobius melanostomus // Gen. Comp. Endocrinol. 2005. Vol. 140. Р. 1—13.
  21. Corkum L. D., Meunier B., Moscicki M. et al. Behavioural responses of female round gobies (Neogobius melanostomus) to putative steroidal pheromones // Koninklijke Brill NV, Leiden. 2008. № 145. Р. 1347—1365.
  22. Twan W.-H., Wu H.-F., Hwang J.-S. et al. Corals have already evolved the vertebrate type hormone system in the sexual reproduction // Fish Physiol. and Biochem. 2005. Vol. 31, № 2-3. P. 111. doi: 10.1007/s10695-006-7591-1.
  23. Twan W.-H., Hwang J.-S., Lee Y.-H. Hormones andreproduction in scleractinian corals // Comp. Biochem. and Physiol. Part A. Mol. and Integr. Physiol. 2006. Vol. 144. P. 247. doi: 10.1016/j.cbpa.2006.01.011.
  24. Ketata I., Guermazi F., Rebai T. et al. Variation of steroid concentrations during the reproductive cycle of the clam Ruditapes decussatus: A one year study in the gulf of Gabès area // J. Comp. Biochem. 2007. Vol. 147. P. 424. doi: 10.1016/j.cbpa.2007.01.017.
  25. Bing-hui Z., Li-hui A., Chang H. et al. Evidence for the presence of sex steroid hormones in Zhikong scallop, Chlamys farreri // J. Steroid Biochem. 2014. Vol. 143. P. 199. doi: 10.1016/j.jsbmb.2014.03.002.
  26. Ojoghoro J. O., Scrimshaw M. D., Sumpter J. P. Steroid hormones in the aquatic environment // Science of The Total Environment. 2021. Vol. 792. Р. 148306. doi: 10.1016/j.scitotenv.2021.148306.
  27. Weizel A. Steroid hormones in the aquatic environment. Analysis, occurrence and fate of corticosteroids and progestogen. Universität Koblenz-Landau, 2021.
  28. Полунина Ю. Ю., Никитина С. М. Влияние стероидных соединений на темпы роста и плодовитость ветвистоусых ракообразных (Cladocera) // Вода: химия и экология. 2014, № 6. С. 68—75.
  29. Красовская Н. В. Особенности динамики численности салаки в Вислинском заливе // Экологические рыбохозяйственные исследования в Вислинском заливе Балтийского моря. Калининград, 1992. С. 121—150.
  30. Гущин А. В., Полунина Ю. Ю. Вклад органического вещества половых продуктов сельди-салаки Clupea harengus membras, поступающих в экосистему Вислинского залива при нересте // Гидрометеорология и экология. 2022. № 67. С. 243—255. doi: 10.33933/2713-3001-2022-67-243-255.
  31. Fent K. Progestins as endocrine disrupters in aquatic ecosystems: Concentrations, effects and risk assessment // Environment International. 2015. Vol. 84. Р. 115— 130.
  32. Kumar V., Johnson A. C., Trubiroha A. et al. The Challenge Presented by Progestins in Ecotoxicological Research: A Critical Review // Environmental Science and Technology. 2015. Vol. 49 (5). Р. 2625—2638.
  33. DeFur P. I., Crane M., Ingersoll C., Tattersfield L. Endocrine disruption in invertebrates: endocrinology, testing, and assessment. Pensacola, 1999.
  34. DeFur P. Use and role of invertebrate models in endocrine disruptor research and testing // ILAR. 2004. Vol. 45. Р. 484—492.
  35. Oehlmann J., Schulte-Oehlmann U. Endocrine disruption in invertebrates // Pure Appl Chem 2003. Vol. 75. Р. 2207—2218.
  36. Oetken M., Bachmann J., Schulte-Oehlmann U., Oehlmann J. Evidence for endocrine disruption in invertebrates // Int Rev Cytol. 2004. Vol. 236. Р. 1—44.