Влияние протатранов на развитие клеток и биосинтез внутриклеточного белка дрожжей Candida Ethanolica BKM Y-2300 T
- DOI
- 10.5922/vestniknat-2024-2-8
- Страницы / Pages
- 118-130
Аннотация
Применение синтетических стимуляторов роста является перспективным направлением повышения продуктивности процесса ферментации. К достоинствам таких соединений можно отнести минимальный расход, стабильность при хранении, невысокую стоимость по сравнению с натуральными стимуляторами роста. Целью работы стало изучение влияния протатранов на развитие клеток и биосинтез внутриклеточного белка для дрожжей Candida ethanolica. Установлено, что результат влияния протатранов зависит от концентраций данных соединений, а также от способа их применения (раздельного либо совместного). Положительное воздействие синтетических стимуляторов на развитие клеток и накопление внутриклеточного белка выявлено в случае их совместного нахождения в составе питательной среды. Таким образом, изученные протатраны могут быть использованы для повышения эффективности стадии ферментации дрожжей Candida ethanolica. Также обнаружены такие характерные особенности воздействия изученных стимуляторов как скачкообразность, наличие нескольких пиков максимума и минимума, наличие негативного влияния. Причины разнонаправленного воздействия протатранов на процессы биосинтеза в клетке дрожжей требуют дальнейшего изучения.
Список литературы
1. Иванищев В. В. От биотехнологии к нанобиотехнологии // Известия Тульского государственного университета. Естественные науки. 2008. № 2. С. 208— 215.
2. Оганесянц Л. А., Федоренко Б. Н. Перспективы организации инновационных биотехнологий // Пищевая промышленность. 2015. № 5. С. 51—54.
3. Кулишов Б. А., Туан Л. А. Применение технологии твердофазной ферментации в производстве биопродуктов // Вестник казанского технологического университета. 2014. Т. 17, № 23. С. 258—261.
4. Красникова Л. В., Сибирцев В. С., Скобелева И. И. Биотехнология функционального кисломолочного продукта с разным соотношением пробиотических культур // Известия Санкт-Петербургского государственного технологического института (технического университета). 2016. № 35 (61). С. 60—63.
5. Максутова В. О. Стадия ферментации в биотехнологии // Science Time. 2016. № 12 (36). С. 407—411.
6. Руденко А. П. Особенности практического использования биореакторов нового поколения // Хвойные бореальной зоны. 2018. Т. 36, № 3. С. 279—282.
7. Филиппова А. С. Анализ различных типов процесса ферментации и аппаратов для ее реализации // Известия Тульского государственного университета. Технические науки. 2022. № 7. С. 396—402. https://doi.org/10.24412/2071-6168-2022-7-396-403.
8. Paalme T., Kevvai K., Vilbaste A. et al. Uptake and accumulation of B-group vitamers in Saccharomyces cerevisiae in ethanol-stat fed-batch culture // World Journal of Microbiology and Biotechnology. 2014. Vol. 30. P. 2351—2359. https://doi.org/10.1007/s11274-014-1660-x.
9. Пермякова Л. В. Классификация стимуляторов жизненной активности дрожжей // Техника и технология пищевых производств. 2016. № 3 (42). С. 46—55.
10. Поморцев А. В., Дорофеев Н. В., Адамович С. Н., Оборина Е. Н. Влияние протатранов на физиологические параметры яровой пшеницы при хлоридном засолении // Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. 2022. Т. 12, № 3 (42). С. 485—490. https://doi.org/10.21285/2227-2925-2022-12-3-485-490.
11. Глызина О. Ю., Адамович С. Н., Белых О. А. и др. Перспективы использования синтетических биостимуляторов при развитии аквакультуры сиговых рыб озера Байкал // Известия Байкальского государственного университета. 2020. Т. 30, № 3. С. 463—471. https://doi.org/10.17150/2500-2759.2020.30(3).
12. Привалова Е. А., Тигунцева Н. П., Адамович С. Н. и др. Трис-(2-гидроксиэтил)аммониевые ионные жидкости — новые биостимуляторы роста спиртовых дрожжей Saccharomyces cerevisiae // Вестник Иркутского государственного технического университета. 2015. № 11 (106). С. 136—141.
13. Reihani S. F. S., Khosravi-Darani K. Influencing factors on single cell protein production by submerged fermentation: A review // Electron Journal. Biotechnology. 2019. Vol. 37. P. 34—40. https://doi.org/10.1016/j.ejbt.2018.11.005.
14. Ugalde U. O., Castrillo J. I. Single cell proteins from fungi and yeasts // Applied Mycology and Biotechnology. 2002. Vol. 2. P. 123—149. https://doi.org/10.1016/S1874-5334(02)80008-9.
15. Бравичева Р. Н., Сатрутдинов А. Д., Благодатская В. М. и др. Штамм дрожжей Candida еthanolica — продуцент биомассы : пат. Рос. Федерации 2061751. № RU2061751C1; заявл. 13.04.92 ; опубл. 10.06.96. Бюл. № 16.
16. Rasool K., Hussain S., Shahzad A. et al. Comprehensive insights into sustainable conversion of agricultural and food waste into microbial protein for animal feed production // Reviews in environmental science and bio-technology. 2023. https://doi.org/10.1007/s11157-023-09651-6.
17. Ribeiro G. O., Rodrigues L. A. P., Santos T. B. S. et al. Innovations and developments in single cell protein: Bibliometric review and patents analysis. Front. Microbiol. 2023. № 13. Р. 1093464. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.1093464.
18. Xue Siyu, Dong N., Xiong K. et al. The Screening and Isolation of Ethyl-Carbamate-Degrading Strains from Fermented Grains and Their Application in the Degradation of Ethyl Carbamate in Chinese Baijiu // Foods. 2023. Vol. 12. P. 1—12. https://doi.org/10.3390/foods12152843.
19. Penido F. C. L., Piló F. B., Sandes S. H. de C. et al. Selection of starter cultures for the production of sour cassava starch in a pilot-scale fermentation process // Brazilian Journal of Microbiology. 2018. Vol. 49. Iss. 4. P. 823—831. https://doi.org/10.1016/j.bjm.2018.02.001.
20. Coulibaly W. H., Jean-Paul Bouatenin K. M., Kouamé A. K. et al. Use of non-Saccharomyces yeast strains as starter cultures to enhance fermented mango juice production // Scientific African. 2020. Vol. 7. P. e00226. https://doi.org/10.1016/j.sciaf.2019.e00226.
21. Tyakht A., Kopeliovich A., Klimenko N. et al. Characteristics of bacterial and yeast microbiomes in spontaneous and mixed-fermentation beer and cider // Food Microbiology. 2021. Vol. 94. P. 103658. https://doi.org/10.1016/j.fm.2020.103658.
22. Raimi A., Roopnarain A., Chirima G. J., Adeleke R. Insights into the microbial composition and potential efficiency of selected commercial biofertilizers // Heliyon. 2020. Vol. 6. Iss.7. P. e04342. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2020.e04342.
23. Maier R. M., Pepper I. L., Gerba C. P. Bacterial Growth // Environmental Microbiology, 2nd ed. Elsevier, 2009. P. 37—54. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-370519-8.00003-1.
24. Sonnleitner B., Locher G., Fiechter A. Biomass determination. J Biotechnol. 1992. № 25 (1-2). Р. 5—22. https://doi.org/10.1016/0168-1656(92)90107-k.
25. Аешина Е. Н., Плынская Ж. А., Величко Н. А. Аминокислотный состав белков надземной части Orthilia secunda (l.) // Химия растительного сырья. 2009. № 1. С. 137—140.
26. Pavlova O. N., Adamovich S. N., Novikova A. S. et al. Protatranes, effective growth biostimulants of hydrocarbon-oxidizing bacteria from Lake Baikal, Russia // Biotechnol Rep (Amst). 2019. № 20 (24). Р. e00371. https://doi.org/10.1016/j.btre.2019.e00371.
27. Мирскова А. Н., Адамович С. Н., Мирсков Р. Г., Воронков М. Г. Фармакологически активные соли и ионные жидкости на основе 2-гидроксиэтиламинов, арилхалькогенилуксусных кислот и эссенциальных металлов // Известия Академии наук. Сер. химическая. 2014. № 9. С. 1869—1883.
28. Seter M., Thomson M. J., Stoimenovski J. et al. Dual active ionic liquids and organic salts for inhibition of microbially influenced corrosion // Chem Commun (Camb). 2012. № 48 (48). Р. 5983—5985. https://doi.org/10.1039/c2cc32375c.